EBV,廣泛傳播的人類皰疹病毒
EBV是1964 年在伯基特淋巴瘤(Burkitt lymphoma,BL)中發現并分離的一種雙鏈 DNA 病毒,在世界各地絕大多數人都是終身的無癥狀感染者。根據國際癌癥研究署(IARC)致癌因子的分類標準,EBV位列第一組致癌因子。人類是EBV天然宿主之一,其是傳染性單核細胞增多癥的病原體,也是一種重要的腫瘤相關病毒。
EBV 感染影響人體的免疫反應,主要感染 B 淋巴細胞和上皮細胞,并在淋巴細胞的致癌轉化中起致病作用,與多種淋巴瘤的發生、發展有密切聯系,如霍奇金淋巴瘤(Hodgkin lymphoma,HL)、彌漫性大 B 細胞淋巴瘤(diffuse large B-cell lymphoma,DLBCL)、原發性中樞神經系統淋巴瘤、移植后淋巴細胞增生性疾病(post-transplant lymphoproliferative disorder,PTLD)、胃癌、伯基特淋巴瘤、結外 NK/T細胞淋巴瘤等。因此,EB 病毒的存在對許多人類癌癥的確切影響是一個值得深究的熱點問題。
EBV 通常在其生命周期中建立兩個階段,潛伏期和裂解復制期。它主要通過唾液、體液、器官移植和輸血等方式在人群之間進行傳播,大約95%的成年人有過感染或處于潛伏感染狀態。
EBV的感染路徑
1. 急性EBV感染
EBV 主要通過唾液傳播,進入人體后先感染口咽黏膜上皮細胞,當上皮細胞被感染后,EBV會在細胞內組裝產生病毒顆粒,釋放到血液中,感染靜息狀態下的初始B細胞(navie B cell)。被感染的B淋巴細胞會繼續產生大量的EB病毒顆粒,繼續進入血液循環,從而導致全身性的感染。
2. 慢性EVB感染
EBV 感染人體后誘發的機制可分為兩個方面。一方面是病毒引起機體免疫紊亂,活化的 T 淋巴細胞刺激巨噬細胞分泌超量的細胞因子,導致全身炎癥反應及淋巴細胞持續的異常活化。另一方面病毒通過潛伏期蛋白激活多條腫瘤信號通路,抑制宿主細胞凋亡,誘導淋巴細胞異常增殖轉化,從而導致腫瘤的發生。
EBV相關疾病
EBV潛伏感染被認為是病毒致腫瘤作用的主要機制,根據被感染細胞表面表達的抗原不同,潛伏感染分為4型:
●Ⅰ型 潛伏感染主要見于 Butkitt’s淋巴瘤(BL);
● Ⅱ型 潛伏感染主要見于鼻咽癌、胃癌、霍奇金淋巴瘤(HL)及NK/T細胞淋巴瘤;
● Ⅲ型 潛伏感染主要見于彌漫性大B細胞淋巴瘤(DLBCL)及免疫抑制患者的淋巴組織增生性疾病;
● Ⅳ型 潛伏感染僅發生在健康病毒攜帶者的B淋巴細胞中。
1. 鼻咽癌
鼻咽癌是發生在鼻咽腔頂部和側壁的惡性腫瘤,是目前最為明確的與EBV感染相關的人類上皮性腫瘤,其發病率居耳鼻咽喉惡性腫瘤首位,位列中國腫瘤發病率前10位。在中國,鼻咽癌主要發生在廣東、廣西、福建等中南部沿海地區,且男性陽性率高于女性,中年人為主,少數為年輕人。
鼻咽癌惡性率高,早期可發生頸部淋巴結轉移。許多患者在出現明顯癥狀后,已經處于晚期階段,因此鼻咽癌的早診早治非常重要。
2. 淋巴瘤
EBV相關淋巴瘤為淋巴細胞發生惡變而致的惡性腫瘤,可發生于 B 淋巴細胞、T 淋巴細胞或NK 細胞,主要包括霍奇金淋巴瘤(Hodgkin lymphoma,HL)和非霍奇金淋巴瘤(non-Hodgkin lymphoma,NHL)。
數據顯示,大概近二十年來,總體上我國霍奇金淋巴瘤的發病例數呈增長趨勢,大部分初治患者可在接受規范化治療后治愈,但也存在少部分復發、難治現象。因此,采用更加有效的檢測方法對患者而言意義重大。
3. 胃癌
胃癌是人體中最常見、最多發、危害最大的惡性腫瘤之一。研究發現,EB病毒感染是胃癌的主要病因之一,EB病毒相關胃癌(Epstein-Barr virus-associated gastric cancer,EBVaGC)約占所有胃癌的1.3%~30.9%。
2014年,美國癌癥基因組圖譜研究計劃(the Cancer Genome Atlas,TCGA)提出了新的胃癌分子分型,將胃癌腫瘤類型分為 EB病毒(Epstein-Barr virus,EBV)陽性、微衛星不穩定型、基因組穩定型和染色體不穩定型。
4. 炎癥性腸病(IBD)
少數情況下IBD患者的腸活檢組織中可以檢測到較多EBER陽性的淋巴細胞,特別是在潰瘍性結腸炎的患者中。此類EBV感染是一種機會性感染,在IBD病程中的作用還不清楚。
什么是“EBER檢測”?
目前臨床常用的 EB 病毒檢測方法包括:
● 外周血EB 病毒 - DNA 定量檢測;
● 外周血 EB 病毒抗體檢測;
● 免疫組織化學( immunohistochemistry,IHC) 檢測;
● EB 病毒編碼的小RNA( EB virus encoded small RNA,EBER) 原位雜交( in situ hybridization,ISH) 等方法。
EBER 原位雜交因其敏感性高、特異性強、定位精準等原因成為活檢組織中診斷EB病毒感染的金標準,可為腫瘤篩查、診斷、治療、及預后判斷提供可靠的病理學依據。
免疫組化法:
EBV潛伏膜蛋白1(LMP-1)被公認為病毒基因組編碼的“具有促細胞癌變和轉移作用”的瘤蛋白, LMP-1可通過免疫組化法進行檢測,使胞質和胞膜著色,客觀表現出被感染細胞中EB的蛋白表達情況。然而,免疫組織化學法僅能檢測病毒蛋白質表達階段,對于細胞內EB低拷貝的檢測靈敏性稍差。
原位雜交法:
EBER原位雜交檢測技術是公認的EB病毒標準檢測方法。對比免疫組化,原位雜交為核酸水平,免疫組化為蛋白水平,抗原抗體反應,雜交更具有特異性。對比非原位方法,EBER原位雜交技術在檢測EBV時具有定位作用,能夠確定病毒與組織和細胞的關系。
在EBER原位雜交檢測中,使用的是寡核酸探針對已知的EBER1和EBER2兩個RNA分子進行雜交,用地高辛抗體標記的核苷酸片段按EBER1和EBER2的特定堿基序列進行互補性設計,最后再經過辣根過氧化物酶-酶底物化學顯色反應來完成,此過程不僅能實現EBV的檢測,亦可提高診斷靈敏度,實現定位準確且特異性強,是公認的EB病毒標準檢測方法。


EBER ISH是判斷器官組織標本EBV感染的金標準(by:Reviews in medical virology, 2008, 18(5): 305-319.)
金迪安? EBER原位雜交檢測
由迪安生物推出的EBER探針(原位雜交法),搭配金迪安?全自動免疫組化染色儀DH-4800 Plus,可全自動完成高質量實驗,提高科室工作效率,增加科室檢測項目,歡迎垂詢試用。

DH-4800 Plus可一鍵完成烤片、脫片、脫蠟、抗原修復直至復染全過程。除常規的免疫組化實驗,還支持原位雜交、細胞免疫化學染色,細胞雙染以及組織雙染等實驗。標準的流程、精密的加樣、穩定的環境,幫助實驗室獲得高質量的染色結果。

參考文獻:
[1]Liu J, Chen Z, Li Y, et al. PD-1/PD-L1 Checkpoint Inhibitors in Tumor Immunotherapy[J]. Front Pharmacol, 2021, 12:731798.
[2]Caetano BFR,Jorge BAS, Muller-Coan BG, et al. EpsteinBarr virus microRNAs in the pathogenesis of human cancers[J]. Cancer Lett,2021,499:14-23.
[3] Yoon CJ,Chang MS,Kim DH,et al. Epstein-Barr virus-encoded miR-BART5-5p upregulates PD-Ll through PIAS3pSTAT3 modulation, worsening clinical outcomes of PD-Llpositive gastric carcinomas[J]. Gastric Cancer,2020 , 23(5) :780-795.
[4] Yang J, Liu ZF , Zeng B, et al. Epstein-Barr virus-associatedgastric cancer:a distinct subtypel]]. Cancer Lett,2020,495:191-199.
[5] Gonzalez H, Hagerling C, Werb Z. Roles of the immune system in cancer: from tumor initiation to metastatic progression[J]. Genes Dev, 2018, 32(19-20):1267-1284.
[6] Yu F,Lu Y,Petersson F,et al. Presence of lytic Epstein - Barr virus infection in nasopharyngeal carcinoma[J]. Head Neck,2018,40( 7) :1515 - 1523.
[7]Goodman A, Patel SP, Kurzrock R. PD-1-PD-L1 immune-checkpoint blockade in B-cell lymphomas[J]. Nat Rev Clin Oncol, 2017, 14(4):203-220.
[8] Shah KM, Young LS. Epstein-Barr virus and carcinogenesis: beyond Burkitt's lymphoma[J]. Clin Microbiol Infect, 2009, 15(11):982-988.
[9] Epstein MA, Achong BG, Barr YM. VIRUS PARTICLES IN CULTURED LYMPHOBLASTS FROM BURKITT'S LYMPHOMA[J]. Lancet, 1964, 1(7335):702-703.
[10]劉江華,劉煒,李彥格. 原發與再激活 EB 病毒感染相關噬血細胞性淋巴組織細胞增生癥的比較分析[J]. 中國實驗血液學雜志,2023,31( 2) : 575 - 580.
[11]滕孝靜,程鳴,周賀等.免疫組織化學切片行EBER原位雜交檢測方法的建立及應用[J].臨床和實驗醫學雜志,2023,22(15):1660-1664.
[12]成敏蓉, 劉杭豐, 高書華, 等. 唾液酸免疫球蛋白型凝集素-15 促進結直腸癌細胞增殖和遷移并 抑 制 腫 瘤 組 織 中 CD4~+ 與 CD8~+T 細 胞 浸 潤 [J]. 中 國 生 物 化 學 與 分 子 生 物 學報,2022,38(05):621-629
[13] 馬會敏, 李鑫, 呂柯冰, 等. 自體造血干細胞移植與 PD-1 抑制劑對復發難治性霍奇金淋巴瘤的療效對比[J]. 中華腫瘤防治雜志, 2022, 29(05):369-375.
[14]武文韜, 李達寧, 鄭帥, 等. 1990—2019 年中國霍奇金淋巴瘤流行趨勢和疾病負擔分析[J]. 醫學新知, 2021, 31(06):433-440.
[15]陳永欽,陳鷺姍,楊映紅.全自動免疫組織化學儀在EBER原位雜交和免疫組織化學雙重染色中的應用[J].中華病理學雜志,2020,49(6):623-624.
[16]吳文娟,王新明,許東勤等.鼻咽癌患者中EB病毒抗體研究概述[J].中國醫學工程,2023,31(09):42-46.